Mixquiahuala de Juárez Hgo. a 29 de Agosto del 2013.

IDENTIFICA MICROORGANISMOS CON BASE EN TÉCNICAS PARASITÓLOGAS.

Practica No. 1

“MÉTODO C.P.S. DIRECTO O EN FRESCO”

Introducción: Como sabemos uno de los primeros microscopistas fue Antón Van Leewenhoek y a mediados del siglo XVII fue el primero en utilizar este método al observar directamente en sus propias heces fecales, trofozoítos de Guardialamblia.                                                                                                   

El método que necesitas es menos equipo y el más sencillo de realizar, corresponde a las preparaciones húmedas, que se hacen directamente con muestras de heces. Para las preparaciones directas de heces frescas o no preservadas, el formol sirve de diluyente.

Las preparacio0nes no teñidas son de especial valor para el estudio de parásitos vivos, como trofozoítos de protozoarios móviles, huevos helmintos y larvas de nematodos . El lugol se emplea principalmente para la búsqueda e identificación de quistes y larvas, con base a sus características. La mezcla normal en el tracto intestinal por lo general no asegura  una distribución uniforme de trofozoítos de protozoarios móviles, huevos de helmintos y larvas nematodos.

Sin embargo el examen de materia fecal directo o en fresco puede revelar o no parásitos, dependiendo de la intensidad de la infección.

FUNDAMENTO:

La solución salina isotónica de las condiciones adecuadas para que las células se mantengan viva. El medio ideal para todo tipo de parasito que puede encontrarse en las muestras de heces, en cualquier etapa de su desarrollo es la solución salina fisiológica, y el lugol en la práctica ha demostrado su eficacia para la tinción e identificación de parásitos intestinales.

• Tipo de Muestra: -2 Muestras de heces fecales.

MATERIAL:

4 Aplicadores de madera.

4 Portaobjetos de 25x76 mm

4 Cubreobjetos.

Reactivos

Solución salina isotónica

Lugol parasitológico.

Equipo:

2 Microscopios.

TÉCNICA 
En un portaobjetos coloca una gota de solución salina isotónica.

2.  Con la punta del aplicador toma una pequeña muestra de aprox. de 1 a 4 mg de heces, en muestras con moco y sangre elegir esta parte para estudiar.

3. Mezclar procurando hacer una suspensión en preparación delgada y no un frotis.

4.   Quitar de la suspensión fibras y otros fragmentos grandes.

5.   Colocar el cubreobjetos lentamente procurando no dejar burbujas.

6.   Examinar al microscópico en forma sistemática a seco débil y a seco fuerte.

7.   Repetir la operación con una gota de lugol en lugar de la solución salina.

REPORTE 

En la primera muestra se observó fibras normales y restos de vegetales; en la segunda muestra lo que se observo fueron Huevos de Ascaris lumbricoides.

 CONCLUSIÓN

Esta práctica nos sirvió para poder observar la presencia de quistes o  trofozoítos de un parásito o así mismo lo que contiene una muestra de heces fecales como los restos de vegetales o de alimentos que el paciente consumió.

Centro de Bachillerato Tecnológico industrial y de servicios No. 199. 

Alumna . Leticia Ortiz Aguilar 

Identifica Microorganismos Con Base En Técnicas Parasitólogicas.

Laboratorio Clínico 

Dr. Vicente Martínez Fragoso.  

SOLUCIONES VALORADAS: EMPÍRICAS Y VALORADAS 

OBJETIVO: Que los  alumnos observen las diferencias entre las soluciones empíricas y valoradas.

EXPERIMENTO 1: Soluciones Empíricas 

Material

• Vaso de precipitados
• Termómetro 
• Agitador de vidrio
• Soporte con anillo de hierro
• Rejilla de asbesto
• Pinzas para crisol
• Baño maría
• Probeta de 50 ml
• Mechero 

Sustancias 

• Cloruro de sodio 
• Agua destilada
• Hielo 

PROCEDIMIENTO:

a) Mida 50 ml de agua destilada y coloquen la  en el vaso de precipitados; agregue unos cuantos gramos de sal y agite. 

b) Con este mismo sistema, vierta poco a poco suficiente cloruro hasta que no pueda disolverse mas; agite y registre la temperatura (t/1).

c) agregue un exceso de sal y caliente hasta que la disolución se complete, agite si es necesario. Cuando todo el soluto se halla disuelto, mida la temperatura (t/2).

d) Deje enfriar el vaso con el contenido y  observar lo que ocurre en el fondo; coloque en un baño de hielo.

EXPERIMENTO 2: Soluciones Valoradas

Material 

• Matraz aforado
• Pipeta graduada 
• Pizeta
• Vaso de precipitados
• Balanza granataria
• Agitador

Sustancias 

• Ácido clorhídrico
• Agua destilada
• Hidróxido de sodio 

PROCEDIMIENTO 

a) En este experimento prepara 100 ml de una solución 0.1 M de ácido clorhídrico, por lo que debe calcular el volumen de ácido necesario, tomando en cuenta para realizar este calculo la pureza, tanto como la densidad.

b) Una vez que se ha calculado el volumen necesario, para preparar la solución  mida este con una pipeta y páselo con cuidado a un matraz aforado, que contenga aproximadamente 20 ml de agua destilada, agite, y con ayuda de una pizeta agregue mas agua destilada hasta la marca del aforo.

c) Mueva varias veces asta disolver el soluto y etiquete el matraz con la formula y concentración de la solución.

d) Ahora preparen una solución valorada en donde el soluto es el sólido, serán 100 ml de una solución 0.1 N de hidróxido de sodio.

e) Pese  con precisión la masa que calculó y disuelva en un vaso de precipitados, con un pequeño volumen de agua destilada, agréguela al matraz aforado; agite para disolver completamente el soluto, después  añada agua suficiente, con la pizeta, hasta llegar al aforo. continué moviendo varias veces y etiquete con el concentrado de la solución y la formula del soluto.

conclusión: por medio de los experimentos realizados anteriormente aprendimos a diferenciar una solución valorada y una solución empírica, así como tambien observamos las características que cada solución tiene en diferentes estados de la materia.

Laboratorio Clínico 2 DM

¿cómo podemos preparar soluciones valoradas?

En esta practica conocerás las partes de una solución  e identificaremos las soluciones valoradas mas comunes así como su preparación.

MATERIAL:

• 1 Matraz aforado de 100 ml cloruro de sodio                
• 3 Matraces Erlenmeyer Hidróxido de sodio 
• 1 Balanza granataria Azúcar
• 1 Bureta de 50 ml Solución 0.1 N DE NaOH
• 1 Probeta de 50 ml Indicador de Fenolftaleína               
• 1 Vaso precipitados de 100 ml Agua destilada 
• 3 Vidrios de Reloj
• 1 Embudo chico
• 1 Agitador de vidrio 

PROCEDIMIENTO 

1. En un vidrio de reloj pesar 1 gramo de cloruro de sodio y medir con la probeta 99 ml de agua de la llave (99 gramos). Agregar estas sustancias al vaso de precipitado y disolver la sal en el agua, empleando el agitador de vidrio.

2. En un vidrio de reloj pesar 0.4 gramos de NaOH e introducir dentro de un matraz aforado de 100 ml. Agregar agua destilada hasta el aforo y disolver completamente el hidróxido.                                                                               a) En tres matraces Erlenmeyer agregar a cada uno de ellos 10 ml de la solución preparada de hidróxido de sodio y 4 gotas de indicador de Fenolftaleina.

b) En una bureta de 50 ml poner una solución 0.1 N de HCL.

c) Con la bureta adicionar la solución del ácido a cada uno de los matraces del inciso asta que el color desaparezca y la solución se ponga transparente.

3. En un vidrio de reloj pesar 3.4 gramos  de azúcar de mesa (sacarosa. formula C12H 22-11) y ponerlos en el matraz aforado de 100 ml y agregar agua de la llave hasta el aforo y disolver completamente la sacarosa.

                                                  CONCLUSIÓN               

                Por medio de los experimentos realizados aprendimos los diferentes tipos de soluciones y los procedimientos para reconocerlos.